Interfakultäres Institut für Genetik und Funktionelle Genomforschung (MNF)
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Autosomal dominant cerebral cavernous malformation (CCM) represents a genetic disorder with a high mutation detection rate given that stringent inclusion criteria are used and copy number variation analyses are part of the diagnostic workflow. Pathogenic variants in either CCM1 (KRIT1), CCM2 or CCM3 (PDCD10) can be identified in 87–98% of CCM families with at least two affected individuals. However, the interpretation of novel sequence variants in the 5′-region of CCM2 remains challenging as there are various alternatively spliced transcripts and different transcription start sites. Comprehensive genetic and clinical data of CCM2 patients with variants in cassette exons that are either skipped or included into alternative CCM2 transcripts in the splicing process can significantly facilitate clinical variant interpretation. We here report novel pathogenic CCM2 variants in exon 3 and the adjacent donor splice site, describe the natural history of CCM disease in mutation carriers and provide further evidence for the classification of the amino acids encoded by the nucleotides of this cassette exon as a critical region within CCM2. Finally, we illustrate the advantage of a combined single nucleotide and copy number variation detection approach in NGS-based CCM1/CCM2/CCM3 gene panel analyses which can significantly reduce diagnostic turnaround time.
Zerebrale kavernöse Malformationen (CCMs) sind vaskuläre Fehlbildungen des zentralen Nervensystems, welche sich klinisch durch epileptische Anfälle, fokale neurologische Ausfälle und Kopfschmerzen äußern. Sie treten sowohl sporadisch als auch im Rahmen einer autosomal-dominant erblichen Form auf. Krankheitsassoziierte Varianten wurden in drei Genen beschrieben: CCM1, CCM2 und CCM3. Patienten mit pathogenen Varianten im CCM3-Gen fallen häufig durch einen schwereren Phänotyp und ein früheres Manifestationsalter auf. Der genaue Verlauf der molekularen CCM-Pathogenese ist jedoch bisher nicht ausreichend verstanden. In dieser Arbeit wurde deshalb die Entwicklung eines humanen in vitro Modells in den Fokus gestellt. Im Gegensatz zu bisher publizierten Studien, die auf einer transienten Herunterregulation von CCM3 beruhen, wurden hier die Folgen eines Langzeit-CCM3-Verlustes untersucht. Unter Verwendung der Komponenten des CRISPR/Cas9-Systems wurde ein Modell etabliert, welches die komplette Inaktivierung von CCM3 in kavernösen Endothelzellen von Trägern heterozygoter pathogener Keimbahnvarianten nachahmt.
In humanen Endothelzellen führte die CRISPR/Cas9-vermittelte CCM3-Inaktivierung zu veränderten endothelialen Eigenschaften, welche die Morphologie, die Apoptoseinduktion, die Stabilität kapillarähnlicher Strukturen sowie die Sphäroidorganisation umfassen. Zudem kam es zu einer vermehrten Aktin-Stressfaserbildung. Auf molekularer Ebene war eine veränderte Expression von Genen zu beobachten, deren Produkte eine Rolle in der Regulation von Zellverbindungen, der Zellmembran oder der extrazellulären Matrix spielen. Insbesondere das unter Basalbedingungen stark in Endothelzellen exprimierte Fibronektin war signifikant herunterreguliert. Die Zugabe exogenen Fibronektins konnte die Zellmorphologie, die Sphäroidorganisation und die kortikale Anordnung des Aktin-Zytoskelettes normalisieren. Da auch nach CRISPR/Cas9-induzierter Inaktivierung von CCM1 und CCM2 diese Effekte beobachtet werden konnten, deuten diese Ergebnisse darauf hin, dass der Aufbau einer intakten fibronektinhaltigen endothelialen Matrix von der Funktionalität der CCM-Proteine abhängt. Künftige Studien werden die Modulation der gestörten endothelialen Apoptoseinduktion als neuen Ansatz zur Identifizierung medikamentöser Therapieoptionen adressieren.